九章节DNA序列测定.ppt
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1、第九章 DNA序列测定,第一节 概 述,一、DNA序列测定,即核酸DNA分子一级结构的测定,是现代分子生物学一项重要的技术。 1963年,Sanger和Thompson等人第一次完成胰岛素51个氨基酸的序列测定,这在当时来说是一件了不起的大事。70年代后期,Sanger和Maxam-Gilbert等人又建立了核酸序列测定的方法,Sanger双脱氧末端终止法和Maxam-Gilbert化学裂解法将核酸序列测定技术推进到“直读”阶段,使核酸序列测定变得远比蛋白质氨基酸序列测定容易,这样人们可以通过核酸序列和遗传密码推导出蛋白质氨基酸的序列。,二、DNA序列测定工作原理,在四种反应体系中,寡聚核苷酸
2、分别终止于不同位置的A、T、G或C碱基,将待测DNA片段转变成一系列放射性核素标记的单链DNA片断,并使其一端为一固定的末端,而另一端由于长度不同,成为一系列相差1个碱基的连续末端。经电泳分离,放射自显影,可直接读出DNA的序列。,三、核酸序列分析的目的意义和策略(具体方法),(一)序列分析的目的,2种: 1、确证性测序 通过测定对突变进行定位和鉴定,应用时测定野生型基因上同源区和突变体的相应序列直接在一张胶片上比较二者序列差异。(已知基因序列) 2、从头序列 目的是提供一段DNA准确的核苷酸序列。(未知基因序列) (二)测定在生物医学领域相应应用,2个方面: 1、对已知基因序列检查,特别是有
3、遗传倾向的病例检测相关基因有无突变,有助于阐明疾病发病机理及建立相应诊疗方案。 2、对已经克隆的未知序列进行测定,从而阐明该基因的一级结构,如人类基因组计划中大量的工作是要阐明克隆片段的核苷酸的排列顺序。 (三)序列分析的策略(具体方案) 测序目的不同或靶DNA片段大小有区别,则序列分析的具体方案有所不同,所以测序之前应根据相应情况制订序列测定的策略,这个问题在后面将涉及到,但由于学时限制,不可能完全展开来讲,请同学参看相关书籍。,四、测序的常用方法,DNA序列测定常用方法有如下3种:,不管是上述哪一种方法,测序基本过程如下: 1、制备待测DNA序列模板; 2、酶促或化学反应将其转变“等差数列
4、”(n=1); 3、PAGE; 4、读序。(P255,图10-2),五、测序的基本过程,六、测序技术的最近发展,1、商品化测序试剂盒 解决了质粒问题,节省了时间,但缺乏灵活性。 2、自动化测序仪 以酶学测序反应或(和)放标测序产物为基础,微机处理。 3、热循环测序 使极少数测序产物线性放大。 4、测序商品化 60.-180.¥,搞定。,七、DNA序列测定的应用,分析基因组核苷酸排列序列 分析基因序列 基因定点诱变的基础 基因工程载体构建中DNA序列定位和排序的基础 确定DNA序列中蛋白质的编码区,第二节 Sanger双脱氧末端终止法,一、原 理,(一)DNA复制的4个基本条件 1、ssDNA模
5、板 2、DDDP 3、带有3-OH末端的单链寡核苷酸引物 4、4种dNTP (二)链终止剂(chain-reminator)-2,3-二脱氧核糖核酸酶 当3-OH由于脱氧或被取代,下一个核苷酸不能通过5磷酸形成3,5磷酸二酯键,使链的延伸反应终止在这个异常的核苷酸处。如果用相同的4组引物-模板混合物,每一组加4种dNTP,其中1种用32P(或35S)标记,加1种ddNTP,每组将产生一种特异性的以ddNTP为末端的不同长度的核苷酸链,经PAGE分离,即可读出被测定的全部顺序(dNTP和ddNTP竞争结合底物)。(P255,图10-2),(三) Sanger双脱氧链终止法的原理,在DNA合成时,
6、利用ddNTP与dNTP竞争掺入到新生的DNA链上使链终止的原理。即在A、C、G、T 4种反应体系中,分别加入不同的ddNTP,其他试剂相同,经酶促合成反应,生成具有相同的5末端,而3不同的DNA片段的混合物。经电泳分离,放射自显影,直接读出DNA的核苷酸序列。,二、试 剂,(一)引物 酶促测序反应中利用一个与模板特定序列互补的合成寡核苷酸作为DNA合成的引物。 在许多情况下可将靶DNA片段克隆于M13噬菌体或噬菌粒载体,以取得单链DNA分子作为模板。也可用Sanger法测定变性双链DNA模板序列(如变性质粒DNA)。以上两种情况都可以采用能与位于靶DNA侧翼的载体序列相退火的通用引物,不必取
7、得与未知DNA序列互补的引物。M13噬菌体重组子的通用测序引物一般长15-29bp,与紧靠M13mp18多克隆位点区的HindIII或M13mp19多克隆位点区EcoRI位点的序列互补。这些引物同样也可用于PUC质粒的DNA进行“双链”测序,并且已经商品化。,(二)模板 纯单链DNA和经过热变性或碱变性的双链DNA都可以用作Sanger法测定的模板。模板的质量和所用的DNA聚合酶的种类是至关重要的。 通常采用M13噬菌体颗粒分离到的单链DNA模板效果最佳,用变性双链DNA作模板则难获此效果。小量制备质粒DNA常被寡核苷酸小分子,核糖核苷酸及DNA聚合酶抑制剂所污染,前两者可被用作随机引物,造成
8、假象和强终止现象,使测序胶含糊不清。采用小量制备质粒DNA测定未知DNA克隆片段的序列,并不可取,如果用CsCl-溴化乙锭梯度离心结果纯化质粒DNA,测序结果会好得多,但又耗费大量的人力和物力。,DNA序列测定模板制备方法 因为DNA是相当大的分子,一般由几kb组成,最小的质粒和病毒也在1kb以上,而测序的最好方法,一次也只能测几百个bp(以300-500bp为好,300bp最佳),所以测序前,可以用2种限制酶消化待测DNA,使其降解成小片段,用琼脂糖凝胶电泳分离回收。回收片段,如果超过700-800bp,则进行第二次限制酶消化,再次分离回收。然后分别测定每个片段的顺序。由于两种限制酶在DNA
9、链上的切点位置不同,产生的片段之间有交错重叠顺序,据2片段的这种末端重叠现象,用计算机定出各片段的位置,而排出DNA的全部序列。 在测序中,小片段DNA只需直接克隆到M13mp或者质粒载体中,进行双链或单链模板测序。现在常用的M13mp载体一般是成对设计,如M13mp18与M13mp19都有相同的多克隆位点,但方向相反。同一待测的DNA片段分别克隆到这两个载体中,用一通用引物进行测序。对于数kb大片段DNA分子,则有几种策略,如定向克隆,内部片段克隆,原位亚克隆,包含上述用2种限制酶消化DNA等。,1、用噬菌体M13克隆待测DNA片段 1)噬菌体-是寄生在细菌的病毒。存在3种状态,有尾20面体
10、,无尾20面体和丝状单链噬菌体(filamentous),M13是一类雄性特异的大肠杆菌噬菌体,含单链环状的DNA。它感染细菌(宿主菌)呈溶原状态生长,在菌体内形成过渡阶段双链环状复制型DNA(Replicative form DNA,RF DNA),在适当的条件下,可以扩增至数百个拷贝。成熟的噬菌体成为单链(正链、RF则以正链为模板复制1条链,再以此链复制正链)分泌到培养液中。因此双链DNA(RF)可以按质粒提取方法从细菌细胞中制备,做为克隆所用的载体。从培养上清液提取成熟的单链DNA做为测序模板。 在感染过程中,M13并不杀死细胞,但细胞的生长受到某种程度抑制。dsDNA复制又产生大量的s
11、sDNA,它被1个外壳蛋白包装成成熟的噬菌体,在细胞生长的过程中,子代噬菌体颗粒释放出来,这是M13不同于其他噬菌体的特点。每ml培养液沉淀的噬菌体可提取5-10mgssDNA,产量是很高的。用作克隆载体,M13有1个得天独厚的优点,即可产生大量含有外源DNA其中1条链的DNA分子,后者可在下列工作中充作模板: (1)末端终止法测序 (2)制备“放标”单链用于杂交DNA探针 (3)利用寡核苷酸进行定点诱变。,2)M13mp18和M13mp19载体 (1)mp系列载体特点: 都是从同一重组M13mp1改造而来。 在基因II-IV(500bp,570bp左右)之间有1个多克隆位点(multiple
12、 cloning sites,MCS)可供外源基因插入。 该区域(MCS)插入了1小段Ecoli.DNA,有-半乳糖苷酶基因(LacZ)的调控序列及其N端146个aa编码信息,它与宿主菌(含LacZ)-互补,形成有活性的-半乳糖苷酶,使平板上底X-gal生色成蓝噬菌斑,当外源基因插入MCS,破坏了-互补,几乎无一例外生成无色(白)噬斑。这是一种非常有效的克隆筛选选择性标志。 (2)M13mp18和M13mp19是一对载体,它们有相同的13个多克隆位点,但方向相反。(当RF DNA被两种限制酶切割后,M13mp18和M13mp19轻易不能重新环化,当连接混合液中含外源匹配末端dsDNA片段时方闭
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